蛋白纯化–免疫沉淀(immunoprecipitation,IP)

总述:免疫沉淀(IP)是一种利用抗原与抗体的亲和力,从溶液中特异性分离抗原的方法。常常借助此技术来分离纯化目的蛋白。纯化后的蛋白可以利用SDS-PAGE、western-blot等实验方法来进一步分析。


免疫沉淀的原理:

免疫沉淀原理图

首先需要获得含有目的蛋白的混合物,然后将一抗加入混合液中去识别目的蛋白,接着加入固定了proteinA/G或第二抗体的磁珠或琼脂糖颗粒,使抗原-抗体复合物附着在磁珠或琼脂糖上,最后充分洗涤磁珠,然后用酸或SDS溶出目的蛋白。

当没有合适的抗体时,可以先将目的蛋白与His-tag等标签融合表达,使用融合标签的看题进行免疫沉淀,对目的蛋白进行纯化。

ProteinA:20世纪中期,Jensen发现有一种蛋白可以与人和兔血清抗体广泛结合,该蛋白于1964年首次被称为Protein A。 Protein A是一种金黄色葡萄球菌细胞壁蛋白质,分子量42KD,它能够特异性地结合多种免疫球蛋白的Fc区段而与Fab区或轻链结合很弱。天然的Protein A有5个IgG结合结构域和未知功能的非Fc结合域,结构示意图如下:

ProteinA结构示意图

此结构的蛋白A大量结合IgG的同时,其非Fc结合域能结合部分杂蛋白,导致洗脱下来的IgG纯度不够,因此科学家利用基因工程的方法克隆Protein A的基因并进行改造,得到重组型蛋白A,其非特异性结合明显降低。重组的蛋白A经过改造后有一个C端的半胱氨酸,可以单点偶联到琼脂糖上,降低空间位阻的同时提高IgG的结合能力。一步亲和层析后样品纯度可超过90%。

ProteinG:蛋白G来自于链球菌G族的细胞表面蛋白,是III型Fc受体,分子量为25KD,其通过类似于蛋白A的非免疫机制而结合抗体的Fc段,蛋白G与蛋白A均可结合抗体的Fc段,不同的是,蛋白G还能结合Fab段,且蛋白G可以更广泛的结合更多类型的IgG分子,多克隆IgG分子,同时蛋白G与血清蛋白结合水平低,产物纯度高,且配基脱落更低。蛋白G可以纯化不能与蛋白A结合的哺乳动物抗体。重组型的蛋白G经改造后已经去除了白蛋白结合位点(血清白蛋白是抗体来源的主要污染物)及细胞表面结合位点,减少了非特异性结合。

蛋白A对兔来源抗体的亲和力较高,蛋白G对于小鼠等部分哺乳动物抗体的亲和力较高。

固相化载体–琼脂糖颗粒和磁珠:琼脂糖颗粒为网状结构,即使在颗粒内部也可以与抗体结合。因此,与目的蛋白的结合量也会变大。磁珠为简单的球形,操作简便,可以缩短实验时间。如果磁珠表面有合适的涂层,可以降低背景。但有时会出现结合量不足的情况,与琼脂糖颗粒相比,价格稍高。

表面活性剂:一般来说在免疫沉淀中,为了减少蛋白质间以及蛋白质-磁珠间的非特异性结合,可以添加最佳浓度的盐和中性表面活性剂。但是,添加表面活性剂后,有时也会使抗体结合力降低,因此,在使用单克隆抗体时,需要进行预实验。

蛋白分解酶抑制剂:在细胞裂解物和组织提取物等样品中包含的蛋白质分解酶(蛋白酶),可以分解目的抗原以及添加的抗体。因此,为了防止分解可以加入蛋白质分解酶抑制剂。当样品中含有的蛋白质分解酶种类可以确定或预测时,可以使用与其相适应的抑制剂。无法确定时,一般将PMSF和EDTA等低分子抑制剂进行组合使用。

洗脱:一般使用含有2-巯基乙醇(2-ME)等还原剂的SDS样品缓冲液洗脱。洗脱液中,除了目的蛋白,还含有所使用的抗体。在免疫印迹与质谱分析时需要注意。


免疫沉淀的实验方法:

方法1:使用未标记抗体与琼脂糖颗粒

01第一抗体反应

(1)在1.5mL离心管中,加入蛋白提取液500μL以及第一抗体2~10μg。

(2)置于旋转混匀器上,在4℃下使其反应1小时〜过夜。

02第二抗体反应

(1)加入结合了第二抗体(或者proteinA/G)的琼脂糖颗粒。

(2)置于旋转混匀器上,在4℃下使其反应1小时〜过夜。

03洗涤

(1)离心收集琼脂糖颗粒,吸引除去上清,但注意不要吸出琼脂糖颗粒。

(2)加入1mL预冷的洗脱液或洗涤缓冲液,混匀后,进行离心,除去上清液,注意不要吸出琼脂糖颗粒。此操作重复进行 3〜4次。

(3)加入50μL含有2-巯基乙醇(2-ME)的2xSDS样品缓冲液,加热5分钟,使目的蛋白从颗粒上分离。离心后,将上清作为SDS-PAGE样品进行使用。

注:在保持蛋白质活性和三维结构的条件下进行提取无需在酸、堿等苛刻条件下,只在中性条件下使用洗脱用多肽进行提取。

方法2―使用标签抗体结合磁珠

01Input样品的制备

(1)处理样品时需要样品保持低温。向293T细胞(1×107 细胞)中加入50mM Tris、150mM NaCl(pH8.0)、1.2mL的1%NP-40,旋转混匀。然后在12,000 rpm的条件下离心5分钟。回收1mL上清,加入10 µL(=25 µg)的His-Flag-V5-GFP(2.5 mg/mL),制备Input样品。(另外取10 µL作为SDS-PAGE的Input样品使用。)

02抗体反应

(1)每次取50 µL Anti-V5-tag mAb-Magnetic Beads(10mg/mL)装入离心管中,然后用1mL的NET-2 缓冲液洗涤1次。(磁珠容易沉淀,使用前请进行充分的旋转混匀)

(2)接下来,将制备好的Input样品以每份400µL的量加入到磁珠(Magnetic beads)中,并在4°C下旋转60分钟。

(3)然后用1 mL的NET-2缓冲液洗涤4次。(盖子上粘附的东西也需清洗干净)由于可以通过磁力固定,因此在洗涤过程中几乎没有样品损耗。

接下来将写一写CoIP、RIP、ChIP各个实验方法的原理和目的。

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