电泳技术的现状和发展

电泳(Electrophoresis)(来源于希腊语“Hλεκτροφόρηση”,意为“携带电子”)是指分散质粒子在空间匀强电场影响下相对于流体的运动。[1][2][3][4][5][6][7]正电荷粒子(阳离子)的电泳有时被称为阳离子电泳法,而负电荷粒子(阴离子)的电泳有时被称为阴离子电泳。

这种电动现象是在1807年由俄罗斯教授彼得·伊万诺维奇·斯特拉霍夫(Peter Ivanovich Strakhov )和费迪南·弗雷德里克·鲁伊斯(Ferdinand Frederic Reuss)在莫斯科国立大学首次观测到,[8]他们注意到利用稳恒电场能使分散在水中的粘土颗粒发生迁移。电泳本质上是由粒子表面和周围流体之间存在的带电界面引起的。它是根据粒子大小、电荷或亲和力进行分子分离的化学分析技术的基础。

1909年Michaelis首次将胶体离子在电场中的移动称为电泳。他用不同ph的溶液在U形管中测定了转化酶和过氧化氢酶的电泳移动和等电点。

1937年瑞典Uppsala大学的Tiselius对电泳仪器作了改进,创造了Tiselius电泳仪,建立了研究蛋白质的移动界面电泳方法,并首次证明了血清是由白蛋白及α、β、γ球蛋白组成的,由于Tiselius在电泳技术方面作出的开拓性贡献而获得了1948年的诺贝尔化学奖。

1948年Wieland和Fischer重新发展了以滤纸作为支持介质的电泳方法,对氨基酸的分离进行过研究。

从本世纪50年代起,特别是1950年Durrum用纸电泳进行了各种蛋白质的分离以后,开创了利用各种固体物质(如各种滤纸、醋酸纤维素薄膜、琼脂凝胶、淀粉凝胶等)作为支持介质的区带电泳方法。

1959年Raymond和Weintraub利用人工合成的凝胶作为支持介质,创建了聚丙烯酰胺凝胶电泳,极大地提高了电泳技术的分辨率,开创了近代电泳的新时代30多年来,聚丙烯酰胺凝胶电泳仍是生物化学和分子生物学中对蛋白质、多肽、核酸等生物大分子使用最普遍,分辨率最高的分析鉴定技术,是检验生化物质的最高纯度:即“电泳纯”(一维电泳一条带或二维电泳一个点)的标准分析鉴定方法,至今仍被人们称为是对生物大分子进行分析鉴定的最后、最准确的手段,即“Last Check”。

由80年代发展起来的新的毛细管电泳技术,是化学和生化分析鉴定技术的重要新发展,己受到人们的充分重视。

按电泳的原理有三种形式的电泳分离系统:原则上按电泳的原理来分,即移动界面电泳(moving boundary ek|lectrophoresis)、区带电泳(zone electrophoresis)和稳态电泳(steady state electrophoresis)或称置换(排代)电泳(displacement electophoresis)。在自由移动界面电泳,是带电分子的移动速率通过观察界面的移动来测定,该方法已成为历史。代之以采用支持介质的区带电泳。

区带电泳因所用支持体的种类、粒度大小和电泳方式等不同,其临床应用的价值也各有差异。固体支持介质可分为两类:一类是滤纸、醋酸纤维素薄膜、矽胶、矾土、纤维素等;另一类是淀粉、琼脂糖和聚丙烯酰胺凝胶。由于它们具微细的多孔网状结构,故除能产生电泳作用外,还有分子筛效应,小分子会比大分子跑得快而使分辨率提高。它的最大优点是几乎不吸附蛋白质,因此电泳无拖尾的现象。低浓度的琼脂糖电泳相当于自由界面电泳,蛋白质在电场中可自由穿透,阴力小,分离清晰,透明度高,能透过200~7000nm波长的着色区带的检测敏感性,为此第一类支持介质现已被第二类支持介质所替代。 稳太电泳或称置换电泳的特点是分子颗粒的电泳迁移在一定时间后达到稳态,如等电聚焦和等速电泳。 区带电泳是临床检验领域中应用最广泛的技术,有重要临床意义,尤其是其他新技术,更扩大了其应用范围,提高了检测技术,现对该技术的现状与发展作一评述。

一、 正确解释电泳结果,有助于临床疾病判断的参考 新鲜血清经电泳后可精确地描绘出患者蛋白质的全貌,一般常见的是白蛋白降低、某个球蛋白区域升高,提示不同的临床意义。如急性炎症时,可见a1,a2区百分率升高;肾病综合征、慢性肾小球肾炎时呈现白蛋白下降,a2球蛋白升高,β球蛋白也升高;缺铁性贫血时可由于转铁蛋白的升高而呈现β区带增高,而慢性肝病或肝硬变呈现白蛋白显著降低,r球蛋白升高2-3倍,示免疫球蛋白多克隆增高,甚至可见β-r融合的桥连现象,还可在r区呈现细而密的寡克隆区带;对单一克隆浆细胞异常增殖所产生的无抗体活性均一的免疫球蛋白称M蛋白(monoclonal protein)的检测,血清蛋白电泳是其首选的实验诊断方法。可在电泳区带的a2-r区呈现致密而深染,高度集中的蛋白克隆增生区带,称其为m蛋白区带,扫描后形成高而狭窄的单株峰 ,若些峰在r区其峰高与峰底宽之比>2:1,而由于正常免疫球蛋白合成限制造成背景染色浅。由M蛋白所导致的一组疾病如:多发性骨髓瘤、巨球蛋白血症、重链病、游离轻链病、半分子病、良性单株丙球血症和双M蛋白血症等,目前这类疾病已不属罕见。血清蛋白电泳对这类疾病的早期诊断,疗效观察和预后判断均有十分重要的意义。

二、 电泳技术与免疫技术相结合,大大扩大了其临床应用的范围 让电流来加速抗原与抗体的扩散并规定其运行方向、从而加快了沉淀反应速度。免疫电泳技术的种子类很多,如:对流免疫电泳(CIEP)、火箭免疫电泳(RIE)、电免疫扩散(EID)。在种免疫电泳 方法牟基础上,又不断地派生出一些新的技术,如:免疫电泳(IEP)技术,1969年Alper与Johnson推荐免疫固定电泳(IFE)是一种包括琼脂糖凝胶蛋白电泳和免疫沉淀两个过程的操作,是免疫沉淀反应的一种混合技术,检测标本可以是血清、尿、脑脊液或其他体液。1976年血清免疫固定电泳(IF)技术再次被推荐,用于M蛋白的分型。血清蛋白质在琼脂糖凝介质上经电泳分离后,应用固定剂和各型免疫球蛋白及轻链抗血清,加于凝胶表面的泳道上,经孵育让固定剂和抗血清的在凝胶内渗透并扩散后,若有对应的原存在,则在适当位置形成抗原抗体复合物。经染色后蛋白质电泳参考泳道和抗原抗体沉淀区带被氨基黑着色,根据电泳移动距离分离出单克隆组分,可对各类免疫球蛋白及其轻链进行分型。该技术的最大优势是敏感性达50-150mg/dl,操作周期短,仅需数小时,分辨率高,结果易于分析。现最常用于M蛋白的分型与鉴定,已列入临床实验室的常规检测工作。

三、 电泳技术进行同工酶谱分析,提高诊断率 1、血清乳酸脱氢酶同工酶(iso-LDH):测定LDH同工酶有电泳法、离子交换柱层析法、免疫法、抑制剂法和酶切法,但迄今用得取多的仍是琼脂糖凝胶电泳法。经电泳分离后要分离出五种同工酶区带,急性必肌梗塞发病后平均6h LDH1即开始升高,LDH1/LDH2≥1为心肌损伤的阳性决定性水平,肝癌时可见LDH5明显升高,各区带含量的确定,将经电泳分离后的同工酶谱采用扫描予以定量,其精确度明显高于用肉眼判断。 2、血清肌酸激酶同工酶(ISO-CK);测定CK和CH-MB仍是目前用于证实急性心肌梗塞的道选指标。近年来国内一些单位用免疫抑制法测CK=MB,其原理为抗M亚单位的酶活性,因为正常血清中几乎无CK=BB,故将此值乘以2可以认为大致代表CK-MB的活性。此法简单迅速,缺点是特异性差,如患者血清中存在CK-BB或者异常CK时,都将出现假性增高。不少作者报道异常CD-同工酶,一条称巨CK(Maxro-CK),它是CK-BB与免疫球蛋白的复合物,有IgG亦有IgA,在正常血清中Marco-CK仅占0.8%-1.6%.另一条称线粒体CK(CK-MT),CK-MT是结合在肌肉、脑、肝内的线粒体表面,可能是线粒体膜的碎片,在正常血清中CK-MT是不出现的,在心梗时亦不出现,只有当组织极度损伤,由于线粒体和细胞壁极度破坏,方可在血清中检出。由于Macro-CK和不典型的CK-MT均不能被M抗体所抑制,故当它们出现时,会导致CK-MB高于CK总活力的假性升高。使用电泳方法分离CK-MB,是根据CK-同工酶分子结构不同,在电泳缓冲液中,所带电荷各异,可以从阴极到阳极将CK不同组份予以分离,其分别为CK-MM,CK-MB和CK-BB。电泳特点是当出现异常2同工酶如巨CKⅠ、巨CKⅡ等,从电泳图谱上很容易发现,由扫描仪对各条酶进行扫描,报告各条区带所占百分比,结合总酶活力,求得区带的酶省略定值结果。Macro-CK在CK-MM和CK-MB中间,而CK-MT位置靠近阴极端,在CK-MM后面。这样不会将CK-BB和各种异常同工酶误认为是CK-MB而误诊,也可解决CK-MB假性增高的错误原因所在。为此,CK同工酶电泳是项非常实用的检验技术,具有十分重要的临床意义。 3、CK亚型同工酶:此外,CK-MB和CK-MM亚型测定常采用琼脂糖凝胶等电聚焦电泳或高压电泳,由于操作比一般电泳麻烦,故常规常测定尚无法普及。目前引进的自动电泳仪,有试剂盒提供,可作CK亚型分析,参考值:CK-MM1(57.7±4.7)%;CK-MM2为(26.5±5.3);CK-MM3为(15.8±2.5)%;CK-MM3/CK-MM1比值为0.28±0.05(范围0.15-0.39),阳性决定性水平>0.5 。AMI第一天血中以MM3为主,但第二天以后则以MM1为主。采用电泳法分离CKMB,CKMB1和CKMB2在正常人血中CK-MB2极微,一般比值近似是而非,在急性心肌梗塞后4-6h CKMB2亚型即在血循环中可被检测到,故MB2/MB1的比例明显升高,并早于总CK-MB片段的增高。当心肌梗塞缓解后此比便也逐渐下降。也可用于溶栓治疗后的病情观察。

四、 结合酶免疫标记抗体技术,检测脑脊液内寡克隆区带 曾有作者报道采用二维电泳和银染进行CSF蛋白质的分离与鉴定,方法繁复,耗时,现采用高分辨率琼脂糖凝胶电泳分离CSF中的蛋白质,并经抗原和辣根过氧化物酶标记的特异性IgG抗体进行反应来鉴定“寡克隆区带”(OCB),经此酶免疫标记放大技术和显色步骤,蛋白质浓度达31-125ul/L即可予以检测,可使检测灵敏度提高了100倍,这样脑脊液无须浓缩,避免了在浓缩过程中蛋白质的丢失。可用于证实和分辨OCB免疫球蛋白及其型别。若在脑脊液标本中检出OCB,而其相应标本中未能检出区带,则为阳性,真实地反映是由中枢神经系统本身合成的免疫球蛋白,具有重要临床意义。它是一种定性检测,在多发性硬化症时,OCB是一个十分重要的标志物。但须将患者血清和CSF在同一天同步进行分析,以认证不同来源的免疫球蛋白。中枢合成免疫球蛋白是中枢神经系统疾患的一个重要信号,主要用于诊断的鉴别诊断中枢神经系统疾患如:多发性硬化症、痴呆、脊髓炎、付肿瘤性脑炎、神经性梅素等。

五、 利用固相内抗原、抗体反应分离脂蛋白(a),用于心、脑知管独立的危险因子的检测 该技术是利用抗原、抗体反应将电泳分离的脂蛋白予以鉴别。血清经琼脂糖凝胶电泳,再经染色后可出现不同脂蛋白的条带。由于凝胶中脂蛋白等电点不同,不仅可区分a、前β和β区带,又因介质中含有抗脂蛋白(a)[LP(a)]抗体及阳离子存在,抗LP(a)与患者血清中LP(a)结合形成复合物,阳离子则抑制其他脂蛋白的泳动速度,LP(a)便与其他脂蛋白分离开来,使分辨十分清晰的LP(a)条带呈现在前β与γ区域之间,将阳性条带扫描后,可获得区带的面积及其百分含量,该方法使电泳技术趋于完美,大大减少了手工操作的弊端,既可予以半定量,又能将胶片保存,便于比较。提高对心、脑血管独立的危险因子—-LP(a)检测的敏感性和特异性。

六、 按分子量大小进行非浓缩尿蛋白电泳,区分尿蛋白类型 尿蛋白电泳可将尿液中各种蛋白质分离用于区分尿蛋白类型,可在无操作的情况下,协助临床判断肾脏损伤的部位。国内部分实验室采用SDS-PAGE盘状电泳进行尿蛋白分离,该法具有局限性,耗时,操作繁琐,标本要求高,尿液需预浓缩,不适于临床实验室广泛开展。SDS=AGE电泳不需预浓缩,尿蛋白电泳后呈现出中、高分子量蛋白区,带主要反应肾小球病变;呈现出低分子量蛋白区带,可见于肾小管病变及溢出性蛋白尿;混合性蛋白尿则可见到大、中、小各种分子量区带,示肾小球及肾小管均受累及。扫描仪可对电泳后尿液中蛋白质剖象进行扫描,求出百分比,以显示肾小球或肾小管损伤程度,其电泳图谱及扫描图形可作国资料永载,利于分析比较。该技术的最大进步是尿液不需预浓缩,操作简便,结果清晰,仅需三小时即可完成试验,还备有完整的定性标准,易于量化,便于分析,对肾脏疾的诊断,鉴别诊断,指导治疗和判断愈合颇有价值。

七.毛细管电泳

毛细管电泳是 20 世纪 80 年代后期分析化学, 特别是生物分析化学的重大研究进展, 也是目 前发展**为迅速的电泳分离手段之一,又称“高效毛细管电泳(HPCE),它是以高压电场 ” 为驱动力, 以毛细管为分离通道, 依据试样中各组分间迁移率和分配行为上的差异而实现分 离的一类分离技术。与传统的分离方法相比,毛细管电泳的显著特点是高效、快速和微量, 一般上样量仅几 nL。 这一点对于以分析为目的的电泳实验来说, 优势是不言而喻的。 此外, 毛细管电泳还具备了经济、清洁、易于自动化、一机多用和环境污染少等优点。

八.采用 HPCE 分析血清蛋白质

采用 HPCE 分析血清蛋白质获得的结果稳定,并能准确计算。各蛋白质的相对浓度,避免了凝 胶电泳法染色、脱色过程中多种影响因素造成的误差,而且 HPCE 法的结果重复性好,可信 度高, 便于贮存和检索。 前白蛋白在血清中的浓度可以表明营养状态, 而且是确定恶性**、 炎症、肝硬化、何杰金氏病的重要指标,多数电泳法难以分辨,而用 HPCE 法很容易分离定 量,检测波长为 214 或 200nm。

毛细管电泳(CE)增加了白蛋白部分的分辨率,这使得对 双白蛋白血症检测的灵敏度有了很大的提高。HPCE 与 PCR 联用可以用来对传染性疾病、肿 瘤和遗传病进行分子生物学的诊断。以毛细管凝胶电泳分离血液中 HIV-1 的 PCR 产物,并采 用紫外光和荧光检测, 是应用较早的 PCR 产物的 HPCE 分析。 采用激光诱导荧光的检测方法, 可以对 HIV-1 的 DNA 或 cDNA 扩增产物进行定量分析。

激光诱导荧光检测法(LIF)是目前毛 细管电泳中**灵敏的一种检测方法,其灵敏度可高达 l0-12~l0-15mol·L-1,荧光检测器的缺 点是仅能用于有天然荧光或易于用荧光试剂标记或染色的物质的检测, 而且检测器的价格也 较高。但由于 LIF 的高灵敏度和高选择性,它仍是毛细管电泳中不可缺少的检测方式。在一 些恶性**疾病中, RNA 转录后发生修饰作用的核苷水平升高, 可以用来对**的产生进行 标记。利用胶束电动毛细管色谱可以对甲状腺癌病人尿液中 15 种被修饰的核苷进行标记, 在对患白血病的儿童和患乳腺癌的妇女进行的临床研究中, 毛细管电泳脱机与质谱联用鉴定 患者的核苷标记收到了较好的效果。 毛细管电泳可简便快速分析生物样品中各种形式的药物 成分,在药理学研究,法医学检查及临床毒理等方面也有广泛应用。如:抗白血病药物胞嘧 啶-β-D-阿拉伯糖苷,经简单有机溶剂提取样品,检测限为 8μmol/L;

应用胶束电动毛细管 电泳 (MECC) 可监测类抗高血压药物, 在分离液中加入 SDS 和γ-环糊精, 经有机溶剂提取, **低检测限为 10μg/L,在临床常规用药的检测方面,如抗生素类药物阿莫西林可以不需进 行样品的前处理,直接以血浆样品进样,但缓冲液中加入 SDS 可减少蛋白的管壁吸附;有的 药物分析用 MECC 可直接分离,不必特殊处理。如平滑肌解痉药(Flavoxate)能缓解泌尿结 石患者的疼痛,取患者尿液作 MECC 测定,检测限可达 200μg/L。止喘药为治疗哮喘,早产 儿窒息的常用药,取血清,唾液和尿液样品,直接进样后进行多波长测定,其线性范围为 0~200μmol/L,浓度在 5~110μmol/L 范围时有较好的**度。催眠镇静类药物临床应用范 围广,品种多,易发生药物依赖性,且中毒剂量与治疗剂量接近。如需进行药物浓度监测, **低检测限可达 ng/L。

中国的电泳技术起步不算太晚,但由于种种原因,大多数实验室仍采用较落后的电泳设备。随着国际、国内科技发展的日新月异和检验医学发展的突飞猛进,电泳技术也在不断发展和更新,其在临床医学和分子生物学领域中有着极其广泛的应用价值,相信随着该技术的不断发展必将越来越受到同道们的青睐。

九.CSL电泳个性化定制解决方案

根据样本数、胶尺寸、缓冲液容量的不同提供各种不同的配置组合

Cleaver Scientific的 multiSUB水平凝胶电泳装置 是由科学家设计的,考虑到 实验室环境。我们的 multiSUB水平电泳槽提供了 一个易于使用和灵活的平 台,以满足您所有的水平电泳要求。该系统具有广泛的槽和托盘 尺寸以及许多梳状选择,可 以处理各种电泳实验。我们的multiSUB系列水平凝胶装 置提供目前市场上最通用的 DNA和RNA琼脂糖凝胶电泳 解决方案。MSMINI、 MSMIDI、MSCHOICE、 MSCHOICEST、MSMAXI、 MSCREEN、miniRAPIDE、 MSMIDI96和miniONE都提供 了无与伦比的凝胶和缓冲液 体积组合,凝胶大小和样品数量的多功能性。

multiSUB™水平电泳系列提供多种针对DNA和RNA琼 脂糖凝胶电泳

•采用一体成型注塑制造,提供耐久,防 漏的特性,保证实验安全性和设备持久 耐用

•嵌入式电极设计,更换更加简便

•电极为99.99%的纯钳金,同时耐腐蚀

•用电安全,顶盖固定在一个方向上,当 移开顶盖时,电源自动冲缓冲液中断开

•多种凝胶托盘尺寸选择,减少使用过多 的电泳槽

•独特的电泳冷却系统

•按压式的顶盖更方便取下

五个水平电泳槽选择,提供了一个无 与伦比的组合经济的凝胶和缓冲容量 凝胶的大小和样品数的多样选择性。

凝胶尺寸和样品数量要求可以在每个单元中精确匹配, 还可以选择额外的凝胶托盘尺寸。这减少了需要多个 电泳槽来改变凝胶大小或应用。

所有电泳槽的特点是使用可移动的紫外线透明托盘。 为了获得最佳效率和通用性系统可以提供一个、两个或 三个凝胶托盘选项(取决于电泳槽型号)。易于使用,防 泄漏的“即插即用''凝胶浇注坝被列入标准,允许凝胶快 速浇注,同时多亚单元用于凝胶运行。在托盘上没有凹 痕或浇口凹槽来干扰样品的进样。同时也可以使用传统 的胶带封口。.

盖子连接器与大多数主要电源兼容同时提供额外的适配器可以提供完全的兼容性.

凝胶托盘

凝胶托盘是紫外透明的没有凹痕或浇口通道,减少对样本的干扰

独特的ClearSight

ClearSight顶盖解决了冷凝堆积问题,提供一个完全透明的顶盖 观察凝胶和染料的运行进程。这是通过USB实现的电动抽风机内 盖。Clearsight盖子是可作为完整系统的组件或作为升级。

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  1. —体成型的紧凑机型-耐用,防漏的特 性提供了安全和长期使用的保障
  2. 可兼容所有主流品牌的预制胶
  3. 快速制胶和上样,保证了制胶的快速和可靠性
  4. 通用性-可同时用于PAGE电泳和二维电泳模块,同时也可以通过使用同一个电 泳槽进行转印。

三种尺寸,Mini 10 x 10cm, Mini Wide 20 x 10cm, WAVE Maxi 20 x 20cm,具有许多 共同的特点,包括确保无漏密封,快速和 简单的制胶。内置的制胶跑胶模块,消除了传 统制胶过程中玻璃板转移的时间消耗,这一过 程会导致凝胶损坏和错位。

具有永久粘结垫片的玻璃板保证了垫片的完美 对准。

玻璃板夹芯结构简单,夹在压杆之间,密封使 用,使用方便,可使用滑动门或WAVE MAXI锁定系统。

这确保了快速安装时间,而均匀的压力和超软 密封确保制胶的防泄漏。

凝胶完成后,将凝胶运行模块简单插入电泳槽 进行实验。

omniPAGE MINI垂直电泳组成

1. 顶盖和电源线;2. PAGE模块;3. 滑动门;4. 玻璃;5. 内缓冲液室;6. 垫片;7. 外部电泳槽;8. 制胶底座;9. 超软制胶垫;10. 梳子

操作示例

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无论您需要用于常规水平 DNA琼脂糖凝胶电泳的电 源,还是对于技术要求很高 的技术(如大幅面垂直的 SSCP分析),还是使用 IPG条带的第一维IEF, Cleaver Scientific都可以通 过其全面的电源满足您的需 求。每个电源都有一个紧凑 的设计,这意味着实验室占 地面积小,而解释性的自我 提示菜单使设置变得容易。 此外,这些电源符合 IEC61010标准,这是世界上 最严格的电气安全标准之 一。我们的电源采用标准的 4毫米香蕉插头式连接器,与 我们自己的电泳槽和其他制 造商的电泳槽兼容。

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每个电源都有一个2.4”的LCD显示器,显示可用的选项以及当前的运行条件。恒定的电压, 电流和电源选项,以及预编程或用户可编程程序,允许用户保存和重复他们的实验条件。5 组电源输出意味着相同数量电泳槽只需要较少的电源,当同时运行多个电泳槽时节约成本和 时间。

3AMP:完美兼容垂直电泳omniPAGE Maxi. 同时兼容转印系统omniBLOT和半干转 印.

规格 300V, 3000mA, 300W, powerPRO 3AMP是专为几乎所有的大电流电泳应用而 设计的。

powerPRO 3AMP的高电流输出能力非常适合于具有高 强度平板电极,特别是Cleaver Scientific omniBLOT maxi,VS20WAVE和半干式转印系统。电传输可以在恒 定或可编程模式下以定时运行来执行,以防止过热和缓 冲液耗尽。在恒定模式下可延长到最大999分钟的运行 时间对于以恒定小电流进行的过夜转换也是有用的。 powerPRO 3AMP共享其他powerPRO型号的内置协议和 常数参数特性。

300V:常规用于水平电泳,如multiSUB Mini, Midi and Choice,也可用于垂直电泳omniPAGE Mini.

powerPRO 300是一套多样性的平台电 源兼容不同的电泳应用在300V, 700mA和150W功率PR0300具有几乎两 倍的电流和电力市场领先的等效单位。非常适合与 Cleaver Scientific的多个SUB范围的水平电泳系统和 omniPAGEMini垂直电泳系统一起使用。powerPRO 300甚至已经从运行CleaverScience的每个电泳系统 内置了预置协议,并且允许用户创建和保存他们自己的系统的协议。

500V:常规应用于水平电泳,如multiSUB Mini, Midi and Choice.也可用于垂直电泳omniPAGE Mini、Cleaver Scientific DGGE变性梯 度电泳、垂直电泳omniPAGE Maxi。

powerPRO 500具有最大500V、 800mA和300W电压、电流和功率输 出,是一种优秀的通用电源,适合最广 泛的电泳应用。

它可以在一个恒定或可编程的设置下运行多达五个 单元,并且能够存储多达30个编程文件,每个文 件只需6个步骤。这使得powerPRO 500非常适合 需要电气参数需要细微和逐步变化中受益的应用。

例如使用Cleaver Scientific VS20-DGGE和WAVE系 统的DGGE和大格式垂直PAGE电泳。powerPRO 500甚至在运行CleaverScience的每个电泳系统时 都内置了预置协议,并且允许用户创建和保存他们 自己的程序。

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印迹该系统完全集成了计算机控制的直观的genePIX软件, 使化学反应的4.80D动态范围可以一次又一次地检测 出femtogram数量的DNA和蛋白质。

智能化学发光

当成像化学发光墨迹时,通常很难得到正确的曝光时间 通过使用genePIX,可以对chemiPRO进行设置,根据需要 快速还是高质量的图像来提供最佳曝光 由于化学的动 态范围比x射线胶片好,因此也将产生更精确的量化数据,甚至可以捕捉到可见的蛋白质标记的图像,使用genePIX,这些图像可以叠加在化学发光图像上,使分子质量的计算更容易。

TECHNICAL SPECIFICATION

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SYSTEM chemiPRO XS chemiPRO XL
分辨率(百万像素) 6 or 9 6 or 9
有效分辨率(百万像素) 18 OR 27 18 OR 27
成像尽头 CCD CCD
A/D 16 BIT 16 BIT
灰阶 65,536 65,536
动态范围 4.8 4.8
量子效率(@ 425nm) 73% 73%
冷却 -57°C, Peltier -57°C, Peltier
镜头光圈(MOTOR DRIVEN AUTO FOCUS) F0.8or F0.95 F0.8 or F0.95
平台 Moving Moving
Filter wheel (7-position motor driven) All fluorescence APPLICATIONS All fluorescence APPLICATIONS
UV FILTER Yes Yes
暗室
Extended with motor driven stage Yes Yes
光源
Epi LED White Lights Yes Yes
HI-LED (red, blue, green) Optional Optional
HI-LED (red, infrared) Optional Optional
HI-LED (red, blue, green, infrared) Optional Optional
Visible light converter Optional Optional
White light pad for vis旧le stains (20 x 14cm) na Optional
Blue converter screen Optional Optional
Slide-out UV transi llum i n/vtor254,302, 36nm, (20cm x 20cm) Optional Optional
Edge lighting unit NA Optional
尺寸
Max image area (cm) 15×12 34.5×27.6
Min image area (cm) 10×8 15.6×12.5
WxHxD (cm) 40x64x52 57 x 99 x 55
Weight (kg) Approx. 40 Approx. 45
Power Input (V) 100-240 100-240
SYSTEM chemiPRO XS chemiPRO XL
分辨率(百万像素) 6 or 9 6 or 9
有效分辨率(百万像素) 18 OR 27 18 OR 27
成像尽头 CCD CCD
A/D 16 BIT 16 BIT
灰阶 65,536 65,536
动态范围 4.8 4.8
量子效率(@ 425nm) 73% 73%
冷却 -57°C, Peltier -57°C, Peltier
镜头光圈(MOTOR DRIVEN AUTO FOCUS) F0.8or F0.95 F0.8 or F0.95
平台 Moving Moving
Filter wheel (7-position motor driven) All fluorescence APPLICATIONS All fluorescence APPLICATIONS
UV FILTER Yes Yes
暗室
Extended with motor driven stage Yes Yes
光源
Epi LED White Lights Yes Yes
HI-LED (red, blue, green) Optional Optional
HI-LED (red, infrared) Optional Optional
HI-LED (red, blue, green, infrared) Optional Optional
Visible light converter Optional Optional
White light pad for vis旧le stains (20 x 14cm) na Optional
Blue converter screen Optional Optional
Slide-out UV transi llum i n/vtor254,302, 36nm, (20cm x 20cm) Optional Optional
Edge lighting unit NA Optional
尺寸
Max image area (cm) 15×12 34.5×27.6
Min image area (cm) 10×8 15.6×12.5
WxHxD (cm) 40x64x52 57 x 99 x 55
Weight (kg) Approx. 40 Approx. 45
Power Input (V) 100-240 100-240

参考文献

  • [1]^Lyklema, J. (1995). Fundamentals of Interface and Colloid Science. vol. 2. p. 3.208..
  • [2]^Hunter, R.J. (1989). Foundations of Colloid Science. Oxford University Press..
  • [3]^Dukhin, S.S.; B.V. Derjaguin (1974). Electrokinetic Phenomena. J. Willey and Sons..
  • [4]^Russel, W.B.; D.A. Saville; W.R. Schowalter (1989). Colloidal Dispersions. Cambridge University Press..
  • [5]^Kruyt, H.R. (1952). Colloid Science. Volume 1, Irreversible systems. Elsevier..
  • [6]^Dukhin, A.S.; P.J. Goetz (2002). Ultrasound for characterizing colloids. Elsevier..
  • [7]^Anderson, J L (January 1989). "Colloid Transport by Interfacial Forces". Annual Review of Fluid Mechanics (in 英语). 21 (1): 61–99. doi:10.1146/annurev.fl.21.010189.000425. ISSN 0066-4189..
  • [8]^Reuss, F.F. (1809). "Sur un nouvel effet de l'électricité galvanique". Mémoires de la Société Impériale des Naturalistes de Moscou. 2: 327–37..
  • [9]^Hanaor, D.A.H.; Michelazzi, M.; Leonelli, C.; Sorrell, C.C. (2012). "The effects of carboxylic acids on the aqueous dispersion and electrophoretic deposition of ZrO2". Journal of the European Ceramic Society. 32 (1): 235–244. arXiv:1303.2754. doi:10.1016/j.jeurceramsoc.2011.08.015..

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